组织培养

组织培养并不是把组织固定、染色后保存，而是使离开机体的活细胞或组织在适宜环境中继续存活，必要时生长或分化。它可以保留一定组织块，也可以把细胞分散培养。这里以动物材料为例，重点是体外模型如何帮助观察与比较。

材料离开原有位置以后，营养供应、支撑表面及周围细胞关系都会改变。培养体系的价值在于可以较清楚地控制部分条件，但“能够在培养器皿中生活”并不意味着细胞仍完整复制了原来器官的全部状态。

参考：[1] [2]

哈里森1907年的报告试图解决一个具体问题：怎样在活着的状态下观察神经纤维伸长。他将蛙胚的相关组织置于体外支撑环境中，观察到纤维从神经组织伸出，以及末端形态不断变化并伴随纤维延长。

这些观察使生长不再只能由不同时间固定下来的切片间接拼接。报告还比较了不同来源的胚胎组织，并指出组织块整体并不一定按正常形态变化，而某些组织成分仍能发生特征性分化。这是方法的力量，也是作者已经察觉到的体外环境限制。

参考：[1]

原代培养直接来源于生物组织，往往较接近其来源细胞的某些生理特征，但数量、供体差异和可维持的增殖次数都可能限制实验。把细胞转移到新的培养容器继续培养称为传代；发生过传代，并不等于材料已经获得无限增殖能力。

连续细胞系可以在适宜条件下长期增殖，便于提供较稳定、充足的实验材料。然而，其遗传组成和生物学表现仍可能随传代改变。原代材料也有批次和供体差异，不能简单断言一种材料永远“更真实”，另一种便没有研究价值。

参考：[2]

细胞来源、培养条件和传代经历会影响比较结果。细胞是否存活、是否增殖、是否保持特定功能，是需要分别检验的问题。观察到细胞铺满表面，仅说明覆盖程度，不足以证明原组织的分化状态或功能已经完整恢复。相应的功能读出必须与具体研究问题对应。

污染、材料一致性和实验条件差异也会妨碍重复研究。体外模型适合拆解某些细胞相互作用和反应，却缺少完整机体的多层调节。由此得到的结果受所研究的模型和条件限制，并不直接证明对整个人体有效，培养成功也不等同于临床治疗成功。

参考：[1] [2]